Сегодня: 03.12.2024
RU / EN
Последнее обновление: 30.10.2024

Лабораторные маркеры поражения печени при хроническом гепатите C

И.А. Булатова, А.П. Щёкотова, Н.И. Насибуллина, С.В. Падучева, В.В. Щёкотов

Ключевые слова: гепатит С; фиброз печени; цирроз; гиалуроновая кислота; маркеры поражения печени.

Цель исследования — оценить возможность использования данных совместного изучения биохимических тестов, гиалуроновой кислоты (ГК), альфа-фетопротеина (АФП), малонового диальдегида (МДА), каталазы, цитокинов и лептина для определения тяжести поражения печени (стадий фиброза и цирроза) у пациентов с хроническим гепатитом С (ХГС).

Материалы и методы. В исследование включены 100 пациентов с ХГС в фазе реактивации. Контрольная группа включала 30 практически здоровых лиц. Плотность печени определяли методом ультразвуковой эластографии. У пациентов с ХГС в крови определяли биохимические показатели трансаминазы и альбумин, количество тромбоцитов, концентрацию ГК, фактора некроза опухоли-α (ФНО-α), васкулоэндотелиального фактора роста (ВЭФР), лептина, уровень АФП, МДА и активность каталазы.

Результаты. Реактивация ХГС характеризуется увеличением содержания в крови ГК (р=0,01), АФП (р=0,02), МДА (р<0,001), ВЭФР (р<0,001), ФНО-α (р=0,001) и лептина (р=0,001) с одновременным уменьшением количества тромбоцитов (р=0,04) и снижением активности каталазы (р<0,001). Все стадии фиброза в печени при ХГС позволяют стратифицировать сывороточные маркеры ГК и ФНО-α, что подтверждается их прямыми значимыми корреляциями с плотностью печени по данным ультразвуковой эластографии (r=0,42; р=0,001 и r=0,41; р=0,001 соответственно). Наиболее выраженное повышение уровня АФП, ВЭФР, МДА и лептина при одновременном снижении синтеза альбумина, активности каталазы и уровня тромбоцитов наблюдается на стадиях тяжелого фиброза.

Заключение. Сывороточные концентрации ГК и ФНО-α у больных ХГС отражают степень повреждения ткани печени и могут использоваться для стратификации стадий фиброза в печени. Определение концентраций АФП, ВЭФР, МДА, альбумина, каталазы, лептина и количества тромбоцитов может быть использовано в качестве дополнительных тестов для диагностики тяжелых стадий фиброза у пациентов с ХГС.


Несмотря на накопленный к настоящему времени значительный опыт лечения пациентов с хроническим гепатитом С (ХГС), абсолютно очевидны серьезные проблемы, которые связаны с данной инфекцией: высокая частота формирования хронических форм, длительное бессимптомное течение, манифестация заболевания на поздних стадиях (цирроз печени), четкая ассоциация с развитием гепатоцеллюлярной карциномы. Хроническая ХГС-инфекция способна инициировать процессы фиброзообразования в печени и способствовать развитию через 20–30 лет цирроза у 20–45% пациентов и гепатоцеллюлярной карциномы у 5–15% больных [1–4].

Основной задачей при определении тактики ведения пациентов с ХГС является оценка степени некровоспалительных изменений и стадии фиброза в ткани печени. «Золотым стандартом» диагностики ХГС служит пункционная биопсия печени, позволяющая установить степень активности воспаления и выраженность фиброза. Как и всякий инвазивный метод, биопсия требует исполнения правил ее проведения в специализированных учреждениях и квалифицированного персонала для интерпретации результатов, поскольку всегда существует риск развития целого ряда осложнений [1, 5]. Сегодня широко изучаются возможности неинвазивной оценки и мониторинга фиброза в печени. Опубликовано много работ, в которых приводятся данные о диагностической значимости сывороточных маркеров фиброза, позволяющих оценить не только стадию ХГС, но и активность фиброгенеза в печени, таких как гиалуроновая кислота (ГК), коллаген 1V типа [6]. Установлена значительная корреляционная связь III и IV стадий фиброза с уровнем ГК [7–9]. Предложены различные индексы, основанные на соотношении ряда клинико-биохимических показателей: FibroTest и FibroMether (Франция), APRI (США) и ряд других, разработан метод эластографии печени [10–12].

В последнее время многие исследования посвящены определению цитокинового статуса при ХГС. Так, по мнению авторов [13–15], повышенные сывороточные уровни провоспалительных цитокинов соответствуют высокой степени воспаления и фибротических изменений в печеночной ткани.

К сожалению, существующие технологии неинвазивной диагностики фиброза в печени не всегда позволяют разграничить стадии ХГС в начальном периоде заболевания, что обусловлено отсутствием существенных различий, и большую диагностическую значимость имеют при тяжелом фиброзе и циррозе. Комбинация эластографии и лабораторных тестов повышает точность оценки стадии фиброза [16].

Учитывая тот факт, что прогрессирование ХГС и механизм развития фиброза в печени обусловлены многогранностью морфологической реакции печени на повреждение (стеатоз, пигментные отложения, тромбоз, апоптоз, некроз, адаптация, пролиферация гепатоцитов и собственно фиброзные изменения [17]), нам представилось интересным провести комплексное изучение лабораторных маркеров различных патогенетических механизмов, принимающих участие в прогрессировании ХГС.

Цель исследования — оценить возможность использования данных совместного изучения биохимических тестов, гиалуроновой кислоты, альфа-фетопротеина, малонового диальдегида, каталазы, цитокинов и лептина для определения тяжести поражения печени (стадий фиброза и цирроза) у пациентов с хроническим гепатитом С.

Материалы и методы. В исследование были включены 100 пациентов (48 мужчин и 52 женщины) с ХГС в фазе реактивации. Работа осуществлялась на базе инфекционного отделения №2 Пермской краевой клинической инфекционной больницы. Средний возраст больных составил 39,5±10,2 года. Сопоставимая по полу и возрасту контрольная группа включала 30 практически здоровых лиц.

Исследование проведено в соответствии с Хельсинкской декларацией, принятой в июне 1964 г. (Хельсинки, Финляндия) и пересмотренной в октябре 2000 г. (Эдинбург, Шотландия), и одобрено Этическим комитетом Пермского государственного медицинского университета им. академика Е.А. Вагнера Минздрава России. От каждого пациента получено информированное согласие на участие в исследовании.

У пациентов с ХГС рассчитывали индекс массы тела (ИМТ). Диагноз ХГС устанавливали на основании комплекса данных клинико-лабораторного и инструментального обследования. Плотность печени и стадию фиброза определяли методом ультразвуковой эластографии (УЗЭ) на аппарате FibroSkan 502 (Echosens, Франция). Выявление и количественное определение РНК вируса гепатита С проводили методом полимеразной цепной реакции на амплификаторе Real-time CFХ96 (Bio-Rad Laboratories, США) с использованием набора ЗАО «Вектор-Бест» (Новосибирск).

Оценку биохимических параметров сыворотки крови выполняли на биохимическом анализаторе Architect c4000 (Abbott Laboratories, США) с применением одноименных наборов для определения аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы (АСТ) (Abbott Clinical Chemistry; Abbott Laboratories, США) и альбумина набором «Альбумин-Ново» (ЗАО «Вектор-Бест», Новосибирск). Количество тромбоцитов оценивали на автоматическом гематологическом анализаторе Medonic М20 (Boule Medical AB, Швеция).

В сыворотке крови обследуемых лиц с ХГС методом иммуноферментного анализа на фотометре Stat Fax 2100 (Awareness Technology, США) исследовали концентрацию ГК с помощью набора ВСМ Diagnostics (США), фактора некроза опухоли-α (ФНО-α) и васкулоэндотелиального фактора роста (ВЭФР) с использованием одноименных наборов ЗАО «Вектор-Бест» (Новосибирск), лептина набором DSL(ACTIV, США). В качестве теста регенерации гепатоцитов оценивали уровень альфа-фетопротеина (АФП) иммунохемилюминесцентным методом с помощью набора AFP на анализаторе Immulitе-1000 (Siemens, Германия). Концентрацию малонового диальдегида (МДА) в сыворотке крови определяли по методу Ю.В. Владимирова, А.В. Арчакова (1972). Активность фермента каталазы исследовали фотометрически по методу М.А. Королюк (1988).

Статистическую обработку полученных данных выполняли с использованием программы Statistica 6.0 (StatSoft). Результаты представлены в виде среднего и стандартного отклонения (М±σ). Статистическую значимость различий средних определяли по критерию Манна–Уитни. Количественную оценку линейной связи между двумя независимыми величинами проводили с использованием коэффициента ранговой корреляции по Спирмену (r). Различия между выборками считали статистически значимыми при р<0,05.

Результаты и обсуждение. У больных ХГС ИМТ не имел статистически значимых отличий от значений группы контроля (р=0,81), хотя у 11% из 100 обследованных отмечалось превышение нормального ИМТ, соответствующее избыточной массе тела, а у 4% пациентов наблюдались признаки абдоминального ожирения. В целом в группе больных ХГС по данным УЗЭ плотность печени в среднем составила 9,6±9,5 (от 3,1 до 63,9) кПа. Низкая вирусная нагрузка регистрировалась у 31% больных ХГС, высокая — у 69%. По данным лабораторных тестов, в группе обследованных лиц с ХГС в фазе реактивации были статистически значимо повышены уровни трансаминаз АЛТ и АСТ, что свидетельствует о наличии у больных синдрома цитолиза (р<0,001 и р<0,001). Сывороточный уровень альбумина не имел достоверных отличий от группы контроля (р=0,76), хотя у 18% обследованных регистрировалась гипоальбуминемия. Снижение количества тромбоцитов наблюдалось у 16% (р=0,04).

При исследовании уровня прямого лабораторного маркера фиброза печени — ГК в сыворотке крови — обнаружено статистически значимое повышение ее значений в среднем в 2,2 раза у 50% больных (р=0,01). Маркер регенерации гепатоцитов АФП у 21% пациентов с ХГС был повышен практически в 2,5 раза (р=0,02). У 80% больных отмечена активация процессов перекисного окисления липидов, что проявлялось в статистически значимом увеличении концентрации МДА в 4 раза по сравнению с группой контроля (р<0,001). При исследовании антиоксидантного фермента каталазы у пациентов с ХГС выявлено снижение ее активности в 1,6 раза (р<0,001). По результатам иммуноферментного анализа установлено повышение сывороточных концентраций ВЭФР в 4 раза у 82% и ФНО-α — в 11 раз у 85% больных ХГС (р<0,001). Гиперлептинемия наблюдалась у 13% больных (р=0,001). Данные сравнительного анализа исследуемых показателей у больных ХГС и в группе контроля представлены в табл. 1.


bulatova-tablitsa-1.jpg Таблица 1. Исследуемые показатели сыворотки крови у больных хроническим гепатитом С в контрольной группе и при хроническом гепатите С в зависимости от наличия цитолиза (M±σ)

Таким образом, реактивация ХГС сопровождается увеличением вирусной нагрузки, нарастанием некровоспалительных изменений в печени, снижением уровня альбумина и количества тромбоцитов, активацией иммуновоспалительных процессов и перекисного окисления липидов при сопутствующем истощении антиоксидантной защиты, усилением процессов неоангиогенеза и фиброгенеза в печени с активацией регенерации гепатоцитов, что согласуется с результатами, полученными в других исследованиях [7–9, 13–15, 18, 19], где эти показатели изучали по отдельности.

На следующем этапе исследования для сравнения изучаемых факторов при ХГС в зависимости от наличия синдрома цитолиза все больные были разделены на две подгруппы. Подгруппу без цитолиза с нормальными значениями трансаминаз в сыворотке крови составили 32 человека со средним возрастом 43,6±10,9 года, подгруппу с цитолизом — 68 человек в возрасте 36,4±9,2 года (р=0,004) (см. табл. 1). Было установлено, что в зависимости от наличия цитолитического синдрома при ХГС у пациентов с повышенными уровнями трансаминаз регистрируются более высокие значения ИМТ (р=0,02), уровня вирусной нагрузки (р=0,01), значимо повышенные концентрации АФП (р=0,03) и провоспалительного цитокина ФНО-α (р=0,01). Полученные данные свидетельствуют об ассоциации цитолиза с более молодым возрастом, усилением репликативной активности вируса, активацией иммуновоспалительных механизмов и регенерации гепатоцитов. При этом в данной подгруппе больных ХГС отмечено статистически значимое снижение количества тромбоцитов (р=0,04) и активности антиоксидантного фермента каталазы (р=0,04) в сравнении с пациентами с нормальным сывороточным уровнем трансаминаз (т.е. в подгруппе без цитолиза), что указывает на наличие зависимости биологических эффектов этих параметров от концентрации маркеров цитолиза. Полученные результаты позволяют полагать, что повышение вирусной нагрузки, АФП и ФНО-α, а также снижение активности каталазы и количества тромбоцитов способствуют усугублению прогрессирующего характера некровоспалительных изменений в печени, а их сывороточная концентрация у больных ХГС отражает тяжесть повреждения ткани печени, что дает возможность использования этих факторов в качестве дополнительных маркеров для оценки активности процесса.

На третьем этапе исследования нам представлялось интересным определить концентрацию изучаемых факторов у больных ХГС в зависимости от стадии фиброза печени (табл. 2).


bulatova-tablitsa-2.jpg Таблица 2. Исследуемые показатели сыворотки крови (M±σ) у больных хроническим гепатитом С в зависимости от стадии фиброза печени (F)

Из табл. 2 видно, что концентрация исследуемых факторов в сыворотке крови больных ХГС по большей части менялась в ту или иную сторону по мере прогрессирования фиброза в печени. Начальный и умеренный фиброз (FI–II) при ХГС от стадии F0 позволяют дифференцировать следующие параметры крови: уровень вирусной нагрузки (р=0,01), количество тромбоцитов (р=0,01), уровень ГК (р=0,002) и концентрация ВЭФР (р=0,03) и ФНО-α (р=0,01).

Выраженный фиброз печени (FIII) от умеренного (FI–II) у больных ХГС позволяют диагностировать такие параметры: возраст (р=0,03), ИМТ (р=0,02), повышенные уровни АЛТ (р=0,02), АСТ (р=0,02), ГК (р=0,02), АФП (р=0,04), ВЭФР (р=0,01) и ФНО-α (р=0,03) в сыворотке крови при пониженных значениях альбумина (р=0,01), каталазы (р=0,03) и количества тромбоцитов (р=0,002).

Стадию цирроза (FIV) при ХГС позволяет стратифицировать, а также дифференцировать от выраженного фиброза (FIII) изменение следующих лабораторных показателей: увеличение уровня вирусной нагрузки (р=0,01), снижение альбумина (р=0,01), значительное повышение ГК (р=0,01), АФП (р=0,03), МДА (р=0,02), ФНО-α (р=0,03) и лептина (р=0,02).

Таким образом, сывороточные маркеры ГК и ФНО-α позволяют стратифицировать все стадии фиброза в печени при ХГС, что подтверждается их прямыми значимыми корреляциями с плотностью печени по данным УЗЭ (r=0,42; р=0,001 и r=0,41; р=0,001 соответственно). Наиболее выраженное повышение уровня АФП, ВЭФР и МДА при одновременном снижении синтеза альбумина, активности каталазы и уровня тромбоцитов наблюдается на стадиях тяжелого фиброза. Это подтверждается наличием прямых достоверных взаимосвязей со значениями плотности печени для АФП (r=0,43; р=0,001) и ВЭФР (r=0,40; р=0,001) и обратных — для альбумина (r=–0,59; р=0,001) и тромбоцитов (r=–0,56; р=0,001).

Полученные результаты и выявленные корреляционные закономерности позволяют утверждать, что сывороточные концентрации ГК и ФНО-α у больных ХГС отражают тяжесть поражения печени и могут использоваться для стратификации стадий фиброза печени. Эти данные в определенной степени согласуются с результатами других авторов, подтвердивших соответствие повышенного уровня ГК и ФНО-α в крови степени фиброза в печеночной ткани [7–9, 13–15]. По данным Н.Д. Ющук с соавт. [7], диагностическая эффективность определения ГК для разграничения стадии FIII при хроническом гепатите от FIV при циррозе печени имеет чувствительность 100% и специфичность 84,6%. По данным Ю.В. Лобзина c cоавт. [8] определение ГК в сыворотке крови позволяет дифференцировать только тяжелый фиброз и цирроз (70,7±11,7 и 258,2±95,7 нг/мл при р<0,01), тогда как между FII и FIII статистически значимые различия отсутствуют.

Заключение. Прогрессирование ХГС и фиброгенеза в печени сопровождается активизацией процессов патологической регенерации гепатоцитов и неоангиогенеза, усилением ПОЛ и истощением антиоксидантной защиты, повышением активности воспаления, метаболическими нарушениями и характеризуется увеличением содержания в крови ГК, АФП, МДА, ВЭФР, ФНО-α и лептина с одновременным уменьшением синтеза альбумина, количества тромбоцитов и снижением активности каталазы. Сывороточные концентрации ГК и ФНО-α у больных ХГС отражают степень повреждения ткани печени и могут использоваться для стратификации стадий фиброза в печени. Определение концентраций АФП, ВЭФР, МДА, альбумина, каталазы и количества тромбоцитов можно использовать как дополнительные критерии диагностики продвинутых стадий фиброза (FII–FIV) у пациентов с ХГС. Оценку сывороточного уровня лептина можно применять для дифференциации цирроза печени от фиброза (FI–FIII).

Финансирование исследования. Работа выполнена на собственные средства авторов, а также при спонсорской поддержке ЗАО «Вектор-Бест» (Новосибирск).

Конфликт интересов. ЗАО «Вектор-Бест» не оказывало влияния на ход исследований и его результаты.


Литература

  1. Ивашкин В.Т., Ющук Н.Д., Маевская М.В. Реко­мен­дации по диагностике и лечению взрослых больных гепатитом С. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии 2013; 2: 41–70.
  2. Пименов Н.Н., Чуланов В.П., Комарова С.В., Каран­дашова И.В., Неверов А.Д., Михайловская Г.В., Дол­гин В.А., Лебедева Е.Б., Пашкина К.В., Коршунова Г.С. Гепатит С в России: эпидемиологическая характеристика и пути совер­шенствования диагностики и надзора. Эпи­­­демиология и ин­фекционные болезни 2012; 3: 4–10.
  3. Alter M.J. Epidemiology of hepatitis C virus infection. World J Gastroenterol 2007; 13(17): 2436, https://doi.org/10.3748/wjg.v13.i17.2436.
  4. Perz J.F., Grytdal S., Beck S., Fireteanu A.M., Poissant T., Rizzo E., Bornschlegel K., Thomas A., Balter S., Miller J., Klevens R.M., Finelli L. Case-control study of hepatitis B and hepatitis C in older adults: do healthcare exposures contribute to burden of new infections? Hepatology 2013; 57(3): 917–924, https://doi.org/10.1002/hep.25688.
  5. Szymczak A., Simon K., Inglot M., Gladysz A. Safety and effectiveness of blind percutaneous liver biopsy: analysis of 1412 procedures. Hepat Mon 2012; 12(1): 32–37, https://doi.org/10.5812/kowsar.1735143x.810.
  6. Liu T., Wang X., Karsdal M.A., Leeming D.J., Genovese F. Molecular serum markers of liver fibrosis. Biomark Insights 2012; 7: 105–107, https://doi.org/10.4137/bmi.s10009.
  7. Ющук Н.Д., Знойко О.О., Сафиуллина Н.Х., Келли Е.И. Пункционная биопсия печени и возможности не­­ин­вазивного мониторинга фиброза при хроническом ви­­русном гепатите С. Клинические перспективы гастро­энтерологии, гепатологии 2002; 1: 9–16.
  8. Лобзин Ю.В., Жданов К.В., Гусев Д.А., Стрель­цов А.Г., Голубин Б.В. Сывороточные маркеры фиброза в диагностике и лечении хронического гепатита С. Инфекционные болезни 2005; 3(3): 28–30.
  9. Yamada M., Fukuda Y., Nakano I., Katano Y., Takamatsu J., Hayakawa T. Serum hyaluronan as a marker of liver fibrosis in hemophiliacs with hepatitis C virus-associated chronic liver disease. Acta Haematol 1998; 99(4): 212–216, https://doi.org/10.1159/000040841.
  10. Павлов Ч.С., Глушенков Д.В., Ивашкин В.Т. Совре­менные возможности эластометрии, фибро- и акти-теста в диагностике фиброза печени. Российский журнал гастро­энтерологии, гепатологии, колопроктологии 2008; 18(4): 43–52.
  11. Павлов Ч.С., Глушенков Д.В., Коновалова О.Н., Ивашкин В.Т. Сфера клинического применения неинвазив­ных методов оценки фиброза печени: результаты собствен­ных исследований в многопрофильном стационаре. Кли­ни­ческая медицина 2009; 87(11): 40–45.
  12. Sebastiani G., Halfon P., Castera L., Mangia A., Di Marco V., Pirisi M., Voiculescu M., Bourliere M., Alberti A. Comparison of three algorithms of non-invasive markers of fibrosis in chronic hepatitis C. Aliment Pharmacol Ther 20121; 35(1): 92–104, https://doi.org/10.1111/j.1365-2036.2011.04897.x.
  13. Falleti E., Fabris C., Toniutto P., Fontanini E., Cussigh A., Caldato M., Rossi E., Bitetto D., Minisini R., Smirne C., Pirisi M. Genetic polymorphisms of inflammatory cytokines and liver fibrosis progression due to recurrent hepatitis C. J Interferon Cytokine Res 2007; 27(3): 239–246, https://doi.org/10.1089/jir.2006.0062.
  14. Li K., Li N.L., Wei D., Pfeffer S.R., Fan M., Pfeffer L.M. Activation of chemokine and inflammatory cytokine response in hepatitis C virus-infected hepatocytes depends on toll-like receptor 3 sensing of hepatitis C virus double-stranded RNA intermediates. Hepatology 2012; 55(3): 666–675, https://doi.org/10.1002/hep.24763.
  15. Farci P., Wollenberg K., Diaz G., Engle R.E., Lai M.E., Klenerman P., Purcell R.H., Pybus O.G., Alter H.J. Profibrogenic chemokines and viral evolution predict rapid progression of hepatitis C to cirrhosis. Proc Natl Acad Sci USA 2012; 109(36): 14562–14567, https://doi.org/10.1073/pnas.1210592109.
  16. Zarski J.P., Sturm N., Guechot J., Paris A., Zafrani E.S., Asselah T., Boisson R.C., Bosson J.L., Guyader D., Renversez J.C., Bronowicki J.P., Gelineau M.C., Tran A., Trocme C., De Ledinghen V., Lasnier E., Poujol-Robert A., Ziegler F., Bourliere M., Voitot H., Larrey D., Rosenthal-Allieri M.A., Fouchard Hubert I., Bailly F., Vaubourdolle M.; ANRS HCEP 23 Fibrostar Group. Comparison of nine blood tests and transient elastography for liver fibrosis in chronic hepatitis C: the ANRS HCEP-23 study. J Hepatology 2012; 56(1): 55–62, https://doi.org/10.1016/j.jhep.2011.05.024.
  17. Мехтиев С.Н., Степаненко В.В., Зиновьева Е.Н., Мех­тиева О.А. Современные представления о фиброзе печени и методах его коррекции. Фарматека 2014; 6(279): 80–87.
  18. Жданов К.В., Гусев Д.А., Пастушенков В.Л., Шку­ро А.В. Сывороточное содержание α-фето­проте­ина у больных хроническим гепатитом С на фоне интер­ферон­терапии. Российский журнал гастро­энтеро­логии, ге­па­то­логии, колопроктологии 2004; 14(1, прил.): 12.
  19. Гейвандова Н.И., Ягода А.В., Гудзовская Д.А., Кос­торная И.В. Сывороточные фосфолипиды, показатели пере­кисного окисления липидов и антиоксидантной защиты как дополнительные неинвазивные маркеры активности хронического вирусного гепатита С. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатолологии, колопроктологии 2008; 18(6): 38–43.


Журнал базах данных

pubmed_logo.jpg

web_of_science.jpg

scopus.jpg

crossref.jpg

ebsco.jpg

embase.jpg

ulrich.jpg

cyberleninka.jpg

e-library.jpg

lan.jpg

ajd.jpg

SCImago Journal & Country Rank