Сегодня: 25.11.2024
RU / EN
Последнее обновление: 30.10.2024

Регенеративные клеточные технологии в лечении рецессии десны

С.П. Рубникович, Ю.Л. Денисова, Т.Э. Владимирская, В.А. Андреева, З.Б. Квачева, Г.Ю. Панасенкова, И.Д. Волотовский

Ключевые слова: мезенхимальные стволовые клетки; «Коллост»; рецессия десны; болезни пародонта.

Цель исследования — оценить возможности применения мезенхимальных стволовых клеток (МСК) и биопластического материала «Коллост» в лечении рецессии десны по данным морфологических изменений в тканях патологически трансформированного пародонта в эксперименте.

Материалы и методы. Для эксперимента в качестве моделей использовали рандомбредных самок белых крыс (n=60). Оперативное вмешательство выполняли на верхней и нижней челюстях крыс в области резцов. Перед началом исследования у одной особи в стерильных условиях производили забор жировой ткани в объеме 1−2 мл для получения аллогенных МСК.

Все животные были разделены на 5 групп по 10 крыс в каждой в зависимости от планируемого метода лечения: 1-я — экспериментальная рецессия десны без лечения; 2-я — физиологический раствор; 3-я — гель «Коллост» 7%; 4-я — МСК; 5-я — МСК и гель «Коллост» 7%. Контрольную группу составили 10 лабораторных животных со здоровой десной — интактные крысы. Создание модели экспериментальной рецессии десны осуществляли путем механического иссечения тканей пародонта V-образной формы.

Результаты. Биопластический коллагеновый материал «Коллост» в изолированном виде в процессе биодеградации служит «матриксом» для образования собственной соединительной ткани, обеспечивает адгезию стволовых клеток и их трансформацию в про- и фибробласты. Он способствует уменьшению рецессии десны и глубины десневого кармана, стимулирует процесс эпителизации. Инъекция суспензии клеточного трансплантата в физиологическом растворе активирует процессы клеточной пролиферации и трансформации клеток фибробластного дифферона. Суспензия клеточного трансплантата на стерильном биопластическом коллагеновом материале «Коллост» усиливает эффекты геля и стволовых клеток, способствует нивелированию атрофических и дистрофических изменений десны, усилению механической компоненты, уменьшению рецессии десны и глубины десневого кармана.


Введение

Поиск эффективных методов лечения заболеваний пародонта в настоящее время является актуальной проблемой современной стоматологии. С одной стороны, это обусловлено по-прежнему высокой распространенностью данного заболевания у населения, в том числе у лиц молодого возраста, с другой — недостаточной эффективностью предлагаемых современных средств и методов лечения [1, 2].

По данным ВОЗ, распространенность болезней пародонта достигает 90–95% у взрослого населения, в Республике Беларусь среди 35–44-летних жителей она составляет 94,8% [3]. Рецессия десны является одной из распространенных форм патологии тканей пародонта и по данным эпидемиологических обследований, проведенных в республике, регистрируется в 9,7% случаев у 15-летних пациентов и в 99,3% случаев — у взрослых [4, 5].

В настоящее время существуют различные методы лечения рецессии десны с использованием комплекса терапевтических, хирургических, ортодонтических и ортопедических мероприятий, однако результаты наблюдений не свидетельствуют о длительном и устойчивом восстановлении тканей пародонта [2, 6].

Перспективными направлениями современной науки являются исследование возможности применения для регенерации тканей пародонта аутологичных и аллогенных мезенхимальных стволовых клеток (МСК), разработка новых методов восстановительной терапии и внедрение их в клиническую стоматологию, что позволит повысить эффективность лечения болезней пародонта и улучшить качество жизни пациентов [7–13]. В этом направлении специалистами многих стран проводятся разноплановые исследования, успех которых в значительной степени зависит от выбора экспериментальной модели [14–19].

В настоящее время одним из современных подходов к восстановлению тканей пародонта является применение биопластического коллагенового материала «Коллост» в качестве барьерного матрикса [20]. Гелевая форма биоматериала «Коллост» широко используется в общехирургической практике для регенерации мягких тканей в лечении хронических раневых дефектов кожи различной этиологии [21–23]. Применение коллагенового геля «Коллост» в лечении рецессии десны, в особенности в качестве носителя в тканеинженерных конструкциях, рассматривается как перспективный метод.

Все вышеизложенное указывает на целесообразность проведения аргументированных экспериментально-клинических исследований по применению в стоматологии МСК на коллагеновом геле «Коллост», направленных на активацию процессов восстановления в тканях пародонта и позволяющих повысить эффективность лечения пациентов с рецессией десны.

Цель исследования — оценить характер морфологических изменений в тканях патологически измененного пародонта при использовании для лечения рецессии десны биотрансплантата на основе мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани, иммобилизованных на коллагеновом носителе «Коллост», в эксперименте на животных.

Материалы и методы

Экспериментальное исследование проводилось на базе Научно-исследовательской лаборатории Белорусской медицинской академии последипломного образования. Оперативное вмешательство выполняли на верхней и нижней челюстях крыс в области резцов.

Для эксперимента в качестве модели использовали нелинейных рандомбредных беспородных самок белых крыс (n=60). Масса тела животных составляла 200,0–250,0 г. Крысы содержались в стандартных условиях вивария в соответствии с санитарно-гигиеническими правилами, утвержденными в Республике Беларусь, а также согласно международным правилам «Guide for the Care and Use of Laboratory Animals» (National Research Council, 2011) и этическим принципам Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других научных целей (Страсбург, 2006).

На 1-м этапе исследований у 50 лабораторных животных хирургическим путем была сформирована экспериментальная модель рецессии десны, 10 крыс оставались интактными на протяжении всего срока наблюдений.

Модель экспериментальной рецессии десны у животных создавали на вестибулярной поверхности в области резцов и в области зубодесневого сосочка на верхней и нижней челюстях справа после предварительной анестезии. Обезболивания достигали внутримышечным введением наркотических веществ (фентанил 0,005% + дроперидол 0,25% в соотношении 1:2 в дозе 0,3 мл на 100 г массы тела животного).

Оперативные вмешательства осуществляли путем механического иссечения тканей пародонта V-образной формы с вестибулярной поверхности твердосплавным шаровидным бором с использованием портативного микромотора. Зубодесневой сосочек между резцами иссекали вначале твердосплавным шаровидным бором, а затем скальпелем с целью формирования «черных треугольников».

До начала проведения экспериментальных исследований у одной особи в стерильных условиях производили забор жировой ткани в объеме 1–2 мл для получения аллогенных МСК. Выделение и культивирование МСК, а также создание трансплантатов выполняли в лабораторных условиях на базе Института биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси.

На 2-м этапе исследований на 10-е сутки после создания моделей экспериментальной рецессии десны и завершения процесса эпителизации лабораторные животные были распределены на группы в соответствии с проводимой терапией:

1-я группа (n=10) — сформирована рецессия десны без дальнейшего лечения;

2-я группа (n=10) — проведены инъекции физиологического раствора в ткани десны;

3-я группа (n=10) — проведены инъекции стерильного биопластического коллагенового материала «Коллост» 7% в ткани десны;

4-я группа (n=10) — проведены инъекции суспензии МСК жировой ткани в физиологическом растворе в ткани десны;

5-я группа (n=10) — проведены инъекции суспензии МСК жировой ткани в стерильном биопластическом коллагеновом материале «Коллост» 7% в ткани десны.

Животных выводили из эксперимента по 5 особей из каждой группы через 24 и 38 сут от момента формирования рецессии десны (14-е и 28-е сутки после начала исследования) с соблюдением принципов био­этики (в соответствии со стандартами GLP) на фоне внутрибрюшинного тиопенталового наркоза из расчета 1 мл 5% тиопентала натрия на 100 г массы животного. Забирали биоптат тканей комплекса зуб–ткани пародонта–костная ткань с целью проведения патоморфологических исследований.

В ходе эксперимента изучали челюстно-зубо-десневой блок верхней и нижней челюстей крыс. Иссеченные участки фиксировали в 10% нейтральном формалине в течение 48 ч. Декальцинацию препаратов проводили смесью муравьиной и соляной кислот, а затем подвергали стандартной гистотехнической обработке, после которой из парафиновых блоков изготавливали срезы толщиной 3–5 мкм и окрашивали их гематоксилином и эозином. Изучение микропрепаратов и изготовление микрофотографий осуществляли с помощью микроскопов Axio Imager (Carl Zeiss, Германия) и DMLS с программным обеспечением (Leica, Германия).

Результаты

Эффективность использования биотрансплантата на основе МСК, иммобилизованных на коллагеновом носителе «Коллост» 7%, оценивали путем анализа характера морфологических изменений в тканях пародонта, в которых хирургическим путем была сформирована экспериментальная модель рецессии десны.

Морфологическая картина тканей интактных крыс. На верхней челюсти десневой канал — короткий, без содержимого. Дно канала представлено плоскими эпителиоидными клетками, перифокально — с тонкостенными капиллярами в ткани прилежащей собственной пластинки (СП) десны. Эпителий прикрепления отслоен, представлен узким тяжем фиброзной ткани и эпителиоидных клеток. Свободная часть десны состоит из многослойного плоского эпителия (МПЭ), ороговевающего, с узкой полосой расслоенного и сегментарно отслоенного рогового вещества и мелкими глыбками кератогиалина в цитоплазме клеток зернистого слоя. Отмечаются бледность цитоплазмы базальных клеток, сглаженные и широкие эпителиальные гребешки по наружному краю свободной части десны. СП свободной части десны — рыхлая, малоклеточная (фиброциты, малочисленные фибробласты и единичные мелкие недифференцированные клетки), с диффузно и редко расположенными мелкими группами или поодиночке расположенными полнокровными капиллярами, без признаков воспалительной инфильтрации. Зафиксирована умеренно-клеточная пародонтальная связка, интегрированная с периостом альвеолярного отростка челюсти.

На нижней челюсти интактных крыс наблюдается десневой карман умеренной глубины, без содержимого в просвете. Дно канала — эпителиоциты и рыхлая фиброзная ткань. Эпителий прикрепления представлен узкой полоской уплощенных эпителиальных клеток. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с узкой полосой рогового слоя. Эпителиальные гребешки — короткие и широкие или узкие и удлиненные по наружной поверхности десны. СП свободной части десны состоит из плотной не­оформленной малоклеточной (фиброциты, изредка фибробласты) волокнистой ткани с диффузно расположенными узкими капиллярами. Пародонтальная связка — умеренно-клеточная, интегрирована с периостом альвеолярного отростка челюсти.

На 14-е сутки в 1-й группе (рецессия десны без дальнейшего лечения) на верхней челюсти десневой карман — глубокий (рис. 1, а). Дистальная часть (дно) кармана умеренно расширена, отмечается очаговая пролиферация эпителия. Эпителий прикрепления представлен узкой полоской уплощенных эпителиальных клеток. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с неравномерно узкой полоской рогового слоя. Отмечается минимальная сегментарная про­­ли­ферация клеток базального слоя эпителия. В перифокальном отделе пародонта наблюдаются умеренная фиб­роплазия с умеренным серозно-продуктивным воспалением с переходом на пародонтальную связку и интегрированный с ней периост альвеолярного отростка челюсти.


rubnikovich-ris-1.jpg

Рис. 1. Морфологические изменения в тканях десны животных1-й группы (сформированная рецессия без дальнейшего лечения) на 14-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х200

На нижней челюсти в этой группе (рис. 1, б) десневая борозда умеренно глубокая, десневой канал слегка расширен. Дистальная часть десневого канала умеренно расширена, дно в отдельных случаях утолщено за счет гиперплазии МПЭ с папилломатозом. Эпителий прикрепления оторван, представлен узким тяжем уплощенных эпителиальных клеток. МПЭ свободной части десны — ороговевающий, с неравномерно узкой полоской рогового слоя, с короткими широкими или узкими эпителиальными гребешками в наружной части десны. СП десны состоит из рыхлой волокнистой ткани без воспалительной инфильтрации, с цепочками и поодиночке расположенными капиллярами, умеренно полнокровными. В одном образце обнаружено выраженное серозно-гнойное воспаление с формированием микроабсцесса в прикорневой части зуба с переходом на периост альвеолярного отростка челюсти.

На 14-е сутки во 2-й группе (инъекции физиологического раствора в ткани десны) на верхней челюсти десневая борозда глубокая, десневой канал узкий (рис. 2, а). Эпителий прикрепления оторван, представлен узким тяжем уплощенных эпителиальных клеток. МПЭ свободной части десны — ороговевающий, с набухшим и сегментарно-отслоенным роговым слоем. В дистальной части и у дна зафиксированы мелкие очаги отека и разрыхления эпителия с гидропической дистрофией клеток. СП десны представлена малоклеточной волокнистой тканью с умеренным отеком, набуханием и разрыхлением коллагеновых волокон, констрикцией кровеносных и умеренной эктазией — лимфатических капилляров. Наблюдаются отек и разрыхление проксимального сегмента пародонтальной связки.


rubnikovich-ris-2.jpg Рис. 2. Морфологические изменения в тканях десны животных 2-й группы (инъекции физиологического раствора в ткани десны) на 14-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х100


На нижней челюсти в этой группе (рис. 2, б) видна десневая борозда умеренной глубины. Десневой канал слегка расширен. Дно десневого канала состоит из узкого сегмента рыхлой волокнистой ткани с минимальным серозным воспалением. Эпителий прикрепления оторван, с узким тяжем уплощенного эпителия, перифокально в зоне дна — с серозно-продуктивным воспалением. МПЭ свободной части десны — ороговевающий, с узким тяжем рогового вещества, сегментарно минимально набухшего. Отмечается мультиочаговая минимальная пролиферация клеток базального слоя. СП свободной части десны состоит из малоклеточной рыхлой волокнистой ткани с расширенными лимфатическими капиллярами, очаговым серозно-продуктивным воспалением, в дистальном отделе наблюдаются компактно и полиочагово рыхло расположенные тяжи из плотно упакованных тонких волокон.

На 14-е сутки в 3-й группе (инъекции материала «Кол­лост» 7%) на верхней челюсти десневая борозда неглубокая, десневой канал умеренно расширен, в его просвете геля нет (рис. 3, а).


rubnikovich-ris-3.jpg Рис. 3. Морфологические изменения в тканях десны животных 3-й группы (инъекции геля «Коллост» 7%) на 14-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х100


На дне десневого канала наблюдается очаговая пролиферация эпителиальных клеток. Эпителий прикрепления оторван, с узким тяжем эпителиальных клеток. МПЭ свободной части десны — ороговевающий, с неравномерной полоской рогового слоя. СП свободной части десны состоит из малоклеточной рыхлой волокнистой ткани с мелкими очагами узких капилляров, без компонентов крови в их просвете и без признаков воспаления. Пародонтальная связка — широкая, малоклеточная, интегрирована с периостом альвеолярного отростка челюсти.

На нижней челюсти в этой группе десневая борозда не расширена, десневой канал неглубокий. В его просвете наблюдаются небольшие тяжи геля с очагами разрежения (рис. 3, б). Эпителий прикрепления оторван, представлен узким тяжем рыхлой волокнистой ткани с перифокальной гиперплазией эпителиоидных клеток. Эпителий свободной части десны — ороговевающий, с узкой полосой рогового слоя, расслоенного и сегментарно отслоенного. Отмечается неравномерная гипертрофия МПЭ по внутренней поверхности у дна десневого канала за счет гиперплазии зернистого, шиповатого и сегментарно-базального слоев с тонкими эпителиальными гребешками. СП свободной части десны представляет собой рыхлую неоформленную волокнистую ткань. Пародонтальная связка — малоклеточная, интегрирована с периостом альвеолярного отростка челюсти.

На 14-е сутки в 4-й группе (инъекции суспензии МСК в физиологическом растворе) на верхней челюсти десневая борозда широкая, десневой канал глубокий (рис. 4, а). Прикрепленная часть представлена тяжем эпите­ли­о­идных клеток с гиперплазией их в дистальной части и более выраженной — в области дна, с перифокальной фиброплазией СП десны — с многочисленными профибробластами, которые распространяются на пародонтальную связку и периост альвеолярного отростка челюсти. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с сегментарно расслоенным и/или отслоенным роговым слоем. Очаги неоангиогенеза представляют собой мелкие группы и цепочки эктазированных полнокровных капилляров. Не отмечается признаков воспаления. Пародонтальная связ­ка густоклеточная.


rubnikovich-ris-4.jpg

Рис. 4. Морфологические изменения в тканях десны животных 4-й группы (инъекции суспензии МСК в физиологическом растворе) на 14-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х50

На нижней челюсти в этой группе десневая борозда относительно широкая, десневой канал глубокий, без содержимого (рис. 4, б). Дно канала состоит из узкой полоски рыхлой волокнистой ткани с единичными капиллярами и сегментарно — из проксимальной части пародонтальной связки. В зоне дна десневого кармана намечается формирование рыхло расположенных волокон. Эпителий прикрепления оторван, представлен узкой полоской зрелой соединительной ткани и эпителия. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с обычными или сглаженными эпителиальными гребешками, СП — из зрелой рыхлой соединительной ткани с малочисленными функционирующими капиллярами и участком в дистальном отделе. У дна десневого кармана отмечается преобладание мелких недифференцированных клеток без признаков воспаления. Пародонтальная связка гиперклеточная, дистальная ее часть расширена и интегрирована с периостом альвеолярного отростка челюсти.

На 14-е сутки в 5-й группе (инъекции суспензии МСК в геле «Коллост» 7%) на верхней челюсти десневой канал — обычный или короткий, в просвете содержимого нет или встречаются единичные мелкие глыбчатые фрагменты геля с мелкоочаговым просветлением и крошечным участком фиброза и склероза (рис. 5, а). Дно десневого канала расширено, представлено эпителиальными клетками и дистально расположенной узкой полоской зрелой малоклеточной соединительной ткани. Эпителий прикрепления представлен узким тяжем мелких недифференцированных кле­ток — предшественников фибробластов — и перифокальной относительно широкой полосой эпителиальных клеток. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с обычными или укороченными и сглаженными эпителиальными гребешками, с минимальной сегментарной гиперплазией базальных клеток, а СП свободной части десны — из рыхлой волокнистой ткани, малоклеточной, с мелкими очагами узких капилляров без компонентов крови в их просвете и без признаков воспаления. Пародонтальная связка — широкая, малоклеточная, интегрирована с периостом альвеолярного отростка челюсти.


rubnikovich-ris-5.jpg

Рис. 5. Морфологические изменения в тканях десны животных 5-й группы(суспензия МСК + гель «Коллост» 7%) на 14-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х400

На нижней челюсти в этой группе десневой канал короткий, в просвете виден глыбчатый гель — разрыхленный и сегментарно фрагментированный, со спикулоподобными тяжами фибрина, с мелким очагом инфильтрации мононуклеарами, включая сегменто-ядерные лейкоциты (СЯЛ) (рис. 5, б).

Эпителий прикрепления отслоен, полиморфной гистоструктуры: мелкий участок эпителиоидных клеток с гомогенным межклеточным веществом у дна десневого канала, проксимальный участок из рыхлой малоклеточной волокнистой ткани, очаги тонкостенных эктазированных сосудов с пролиферацией и десквамацией эндотелиоцитов, диффузно расположенные мелкие и недифференцированные клетки. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с относительно широким роговым слоем, а СП свободной части десны — из зрелой малоклеточной волокнистой ткани с расширенными лимфатическими капиллярами и без воспалительной инфильтрации. Дно десневого канала представлено узким тяжем рыхлой мелкоячеистой волокнистой ткани и в дистальной части — полоской эпителиальных клеток.

На 28-е сутки в 1-й группе на верхней челюсти десневая борозда углублена и формирует десневой «карман» (рис. 6, а). Эпителий прикрепления представлен неравномерно узкой полоской МПЭ с очаговым разрыхлением у дна десневого кармана. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с неравномерно узким роговым слоем и низкими широкими эпителиальными гребешками, а СП десны — из рыхлой волокнистой ткани, малоклеточной (фиброциты, редко — фибробласты, диффузно разбросанные лимфоциты и плазматические клетки), с эктазией лимфатических капилляров. Пародонтальная связка неравномерно широкая, умеренно-клеточная, интегрирована с надкостницей альвеолярного отростка челюсти с везикуляцией остеоцитов и набуханием межклеточного основного вещества.


rubnikovich-ris-6.jpg Рис. 6. Морфологические изменения в тканях десны животных1-й группы (сформированная рецессия без дальнейшего лечения) на 28-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х200


На нижней челюсти в этой группе десневая борозда углублена и несколько расширена, без содержимого (рис. 6, б). Очагово в субэпителиальной зоне отмечаются набухание фибробластов и инфильтрация эозинофильными лейкоцитами. Эпителий прикрепления оторван, представлен узким тяжем волокнистой ткани, в одном случае он находится в состоянии отека, сегментации и гидропического некроза. Свободный край десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с низкими и широкими или очагово — с тонкими длинными эпителиальными гребешками, в одном случае он находится в состоянии субтотального отека и гидропического некроза клеток эпителия с микроабсцессом. СП десны представлена малоклеточной волокнистой тканью, в одном случае — с инфильтрацией СЯЛ. Пародонтальная связка — густоклеточная, интегрирована с надкостницей альвеолярного отростка челюсти с везикуляцией остеоцитов и набуханием межклеточного основного костного вещества.

На 28-е сутки во 2-й группе на верхней челюсти десневая борозда углублена (рис. 7, а). Эпителий прикрепления отслоен от корня зуба, представлен чрезмерно узкой полоской отечной соединительной ткани с малочисленными фибробластами и единичными лимфоцитами. Свободный край десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с узкой полоской рогового слоя и широкими низкими, очагово-удлиненными эпителиальными гребешками. Отмечаются набухание и бледность клеток эпителия, в большей степени — шиповатого слоя, и минимальная пролиферация клеток базального слоя. СП десны представляет собой малоклеточную волокнистую ткань, находящуюся в состоянии сильно выраженного отека с набуханием и элиминацией фибробластов, фрагментацией, набуханием и элиминацией коллагеновых волокон. Пародонтальная связка — густоклеточная, с набухшими бледноокрашенными фибробластами, интегрирована с надкостницей альвеолярного отростка челюсти.


rubnikovich-ris-7.jpg Рис. 7. Морфологические изменения в тканях десны животных 2-й группы (инъекции физиологического раствора в ткани десны) на 28-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х200


На нижней челюсти десневая борозда углублена и формирует расширенный десневой карман (рис. 7, б). В просвете десневого кармана наблюдаются сегменты волосяных стержней и относительно обширный участок воспалительного «экссудата» из мононуклеаров (включая СЯЛ), который распространяется на дно десневого кармана и достигает проксимального сегмента пародонтальной связки. Эпителий прикрепления отор­ван от корня зуба, представлен узкой полоской дистрофичного МПЭ. Свободный край десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с сегментом узкого расслоенного и отслоенного рогового слоя, с широкими низкими эпителиальными гребешками, а СП десны — из рыхлой отечной малоклеточной волокнистой ткани, с набухшими фибробластами, малочисленными лимфоцитами, единичными эозинофильными СЯЛ, эктазией и полнокровием венул, очагами элиминации клеточного и волокнистого компонентов. Пародонтальная связка — отечная, с набухшими бледноокрашенными фиб­робластами, интегрирована с отечной надкостницей альвеолярного отростка челюсти, в котором отмечаются набухание и гомогенизация основного костного вещества и везикуляция остеоцитов.

На 28-е сутки в 3-й группе на верхней челюсти десневая борозда формирует десневой карман, в основном без содержимого (рис. 8, а). В проксимальной части зафиксированы мелкие глыбки геля. Сегменты глыбчатого геля выявляются в основном по краю зубного корня с признаками резорбции. Эпителий прикрепления отслоен от края зубного корня, представлен узким тяжем уплощенных эпителиальных клеток. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с неравномерно узкой полосой рогового слоя, а СП десны — из малоклеточной гомогенизированной волокнистой ткани (клетки — фиброциты, фибробласты), с мелкими тонкостенными капиллярами, без признаков воспалительной инфильтрации. Умеренно-клеточная пародонтальная связка интегрирована с периостом альвеолярного отростка челюсти.


rubnikovich-ris-8.jpg Рис. 8. Морфологические изменения в тканях десны животных 3-й группы (инъекции геля «Коллост» 7%) на 28-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х200


На нижней челюсти десневая борозда углублена и очагово расширена (рис. 8, б). В десневом кармане и в ткани десны наблюдаются полиморфные глыбки геля. Эпителий прикрепления представлен узкой полоской уплощенных эпителиальных клеток. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с тонкой полоской рогового слоя, бледноокрашенного. Отмечаются набухание и гомогенизация шиповатых клеток (очагово — везикуляция), очаговая пролиферация, набухание и бледность окраски базальных клеток, наличие тонких и тупоконечных эпителиальных гребешков. СП десны представлена густоклеточной (фиброциты, фибробласты) волокнистой тканью с диффузно расположенными узкими капиллярами. Пародонтальная связка — умеренно-клеточная, интегрирована с надкостницей альвеолярного отростка челюсти, с четкими линиями пластинок остеонов и везикуляцией остеоцитов.

На 28-е сутки в 4-й группе на верхней челюсти десневая борозда углублена, десневой карман — узкий и без содержимого (рис. 9, а). Эпителий прикрепления отслоен (оторван). Отмечаются относительно широкий матрикс, бледноокрашенные фибробласты и эпителиоидные клетки с примесью слоев густоклеточной волокнистой ткани с набухшим, бледноокрашенным межклеточным веществом, диффузно расположенными малочисленными мелкими и недифференцированными клетками. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с неравномерно утолщенной полосой рогового слоя, сегментарно отслоенного. Отмечаются отек и набухание межклеточного матрикса и клеток слоев эпителия с их дискомплексацией, а также набухание и бледность окраски базальных клеток с минимальной их пролиферацией и расширенными эпителиальными гребешкам, местами тонкими. СП десны состоит из малоклеточной волокнистой ткани, сильно отечной, с набуханием клеток и волокнистых структур, с диффузно-очаговой их элиминацией и умеренно выраженным неоангиогенезом. Пародонтальная связка неравномерно утолщена, густоклеточная, умеренно отечная, с набухшими фибробластами и мелкими недифференцированными клетками (стволовые клетки). Она интегрирована с надкостницей альвеолярного отростка челюсти, в которой также встречаются очаги мелких недифференцированных клеток с примесью единичных плазмоцитов.


rubnikovich-ris-9.jpg

Рис. 9. Морфологические изменения в тканях десны животных 4-й группы (инъекции суспензии МСК в физиологическом растворе) на 28-е сутки:

а — в верхней челюсти; х100; б — в нижней челюсти; х100

На нижней челюсти десневая борозда — глубокая, с мешковидно расширенным или объемным десневым карманом (рис. 9, б). Эпителий прикрепления оторван, представлен тяжем эпителиоидных клеток с формирующимися эпителиальными гребешками. Свободный край десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с узкой полоской рогового слоя, сегментарно отслоенного и расслоенного, а СП десны — из умеренно- и слабоклеточной волокнистой ткани, отечной, с очагами элиминации клеток и единичными мелкими недифференцирующимися клетками. Пародонтальная связка — неравномерно утолщенная, отечная, густоклеточная, с преобладанием фиброцитов, минимальным ангиогенезом отростка челюсти, интегрирована с надкостницей альвеолярного отростка.

На 28-е сутки в 5-й группе на верхней челюсти десневой карман — широкий и мелкий (рис. 10, а, б). Его дно состоит из малоклеточной волокнистой ткани с малочисленными мелкими гиперхромными недифференцированными клетками и преимущественно с участком эпителиоидных клеток, формирующих эпителиоидные гребешки. Гель в десневом канале и тканях пародонта не визуализируется.


rubnikovich-ris-10.jpg Рис. 10. Морфологические изменения в тканях десны животных 5-й группы (суспензия МСК + гель «Коллост» 7%) на 28-е сутки:

а — в верхней челюсти; окраска гематоксилином и эозином; десневой карман — широкий и мелкий, в просвете — слизь с пенетрацией лимфоцитами, сегменто-ядерными лейкоцитами и малочисленными мелкими недифференцированными клетками (редуцирующиеся стволовые клетки); х100; б — в верхней челюсти; окраска гематоксилином и эозином; дно кармана — из малоклеточной волокнистой ткани с малочисленными мелкими гиперхромными недифференцированными клетками (редуцирующиеся стволовые клетки), с участком эпителиоидных клеток, формирующих эпителиоидные гребешки; х400; в — в нижней челюсти; х400


Эпителий прикрепления состоит из узкого тяжа малоклеточной волокнистой ткани, с гомогенным межклеточным матриксом, единичными недифференцированными клетками и СЯЛ. Свободный край десны представлен МПЭ, ороговевающим, с относительно широким роговым слоем и узкой внутренней полоской клеток зернистого слоя, с обилием мелких зерен кератогиалина. Отмечается везикуляция клеток шиповатого и базального слоев с гомогенизацией межклеточного матрикса и низкими широкими эпителиальными гребешками. СП десны состоит из малоклеточной сильно утолщенной волокнистой ткани с малочисленными мелкими недифференцированными клетками с тенденцией дифференциации в фибробласты, с умеренным неоангиогенезом. Пародонтальная связка неравномерно широкая, густоклеточная (фиброциты и преимущественно фибробласты, с мелкими очагами набухших фибробластов и их предшественников), интегрирована с надкостницей альвеолярного отростка челюсти нормального строения.

На нижней челюсти десневой карман — умеренно расширенный и мелкий, без содержимого (рис. 10, в). Эпителий прикрепления оторван, представлен узким тяжем эпителиоидных клеток, рыхло упакованных, которые сегментарно составляют дно десневого кармана. Свободная часть десны состоит из МПЭ, ороговевающего, с тонким роговым и уплотненным зернистым слоем. Наблюдается очаговая пролиферация клеток базального слоя с формированием тонких эпителиальных гребешков. СП десны представлена рыхлой густоклеточной волокнистой тканью (фиброциты, преимущественно фибробласты, профибробласты, плазматические клетки, единичные СЯЛ и многочисленные редуцирующиеся недифференцированные клетки). Зафиксирован умеренно выраженный неоангиогенез. Пародонтальная связка — чрезмерно широкая и гус­токлеточная, состоит из фиброцитов, фибробластов и преимущественно эпителиоидных клеток, с малочис­ленными редуцирующимися недифференцированными клетками, интегрирована с надкостницей альвеолярного отростка челюсти нормального строения.

Таким образом, анализ морфологических изменений в тканях пародонта животных, у которых была сформирована модель рецессии десны, позволил оценить результаты применения с целью трансплантации разных биологических материалов и их сочетаний.

Местное введение физиологического раствора в ткани десны обусловливает отек и набухание тканевых и клеточных компонентов десны и пародонта, что нарушает их механическую и биофизиологическую функцию, способствует развитию дистрофических изменений (гидропическая дистрофия) и наслоению воспалительных процессов (пародонтита).

Биопластический коллагеновый материал — гель «Коллост» 7% — в изолированном виде в процессе биодеградации служит «матриксом» для образования собственной соединительной ткани, обеспечивает адгезию стволовых клеток и их трансформацию в про- и фибробласты. «Коллост» способствует уменьшению рецессии десны и глубины десневого кармана, стимулирует процесс эпителизации.

Инъекция суспензии клеточного трансплантата — МСК — в физиологическом растворе активирует процессы клеточной пролиферации и трансформации клеток фибробластного дифферона.

Суспензия клеточного трансплантата на стерильном биопластическом коллагеновом материале «Коллост» усиливает эффекты геля и стволовых клеток, способствует нивелированию атрофических и дистрофических изменений десны, усилению механической компоненты, уменьшению рецессии десны и глубины десневого кармана.

Заключение

Результаты исследования убедительно свидетельствуют, что комбинация суспензии клеточного трансплантата — мезенхимальных стволовых клеток — и стерильного биопластического коллагенового материала — геля «Коллост» 7% — может служить современным перспективным средством для восстановления тканей десны.

Финансирование исследования. Работа не фи­нан­сировалась какими-либо источниками.

Конфликт интересов. У авторов нет конфликта интересов.


Литература

  1. Алямовский В.В., Шестакова Л.А., Ярыгин Е.И., Шмидт П.А., Лазаренко Л.И. Использование стволовых клеток крови плода крысы при воспалительно-деструктивных процессах в тканях пародонта. Институт стоматологии 2014; 1(62): 103–105.
  2. Мусиенко А.И., Мусиенко С.И., Кушнир Д.В., Му­си­енко А.А. Комплексный подход к планированию лечения заболеваний пародонта фактором роста. Стоматология Казахстана 2014; 3(4): 67–68.
  3. Дедова Л.Н., Денисова Ю.Л., Кандрукевич О.В., Со­ломевич А.С., Росеник Н.И. Распространенность бо­лезней пародонта, кариеса корня зуба, чувстви­тель­ности дентина и зубочелюстных деформаций в Республике Беларусь по результатам обследования на­селения в возрастных группах 35–44, 45–54 и 55–64 года. Стоматолог. Минск 2016; 1(20): 9–15.
  4. Дедова Л.Н. Систематика заболеваний перио­донта. Стоматологический журнал 2002; 2: 2–6.
  5. Денисова Ю.Л. Современные ортодонтические ме­ро­­приятия в комплексном лечении рецессии дес­ны у пациентов с зубочелюстными аномалиями. Паро­донтология 2008; 4(49): 74–79.
  6. Денисова Ю.Л., Владимирская Т.Э. Экспери­мен­тальное обоснование применения вакуум-лазеротерапии в комплексном лечении пациентов с болезнями паро­донта в сочетании с зубочелюстными аномалиями и деформациями. Военная медицина 2013; 1(26): 103–107.
  7. Алексеева И.С., Волков А.В., Кулаков А.А., Гольд­шейн Д.В. Клинико-экспериментальное обоснование ис­поль­зования комбинированного клеточного транс­план­тата на основе мультипотентных мезенхимных стро­мальных клеток жировой ткани у пациентов с вы­раженным дефицитом костной ткани челюстей. Кле­точная трансплантология и тканевая инженерия 2012; 7(1): 97–105.
  8. Бармашева А.А., Николаенко Н.С., Самусенко И.А., Орехова Л.Ю., Пинаев Г.П. Сравнительное исследование влияния фибробластов кожи и стромальных клеток кост­ного мозга, заключенных в коллагеновый гель, на ре­генерацию десны. Пародонтология 2012; 17(4): 20–25.
  9. Бухарова Т.Б., Арутюнян И.В., Шустров С.А., Алек­сеева И.С., Федюнина И.А., Логовская Л.В., Вол­ков А.В., Ржанинова А.А., Григорьян А.С., Кулаков А.А., Гольд­штейн Д.В. Тканеинженерная конструкция на ос­нове мультипотентных стромальных клеток жи­ро­вой ткани и материала «Остеоматрикс» для реге­нерации костной ткани. Клеточные технологии в био­логии и медицине 2011; 3: 167–173.
  10. Манашев Г.Г., Лазаренко Л.И., Ярыгин Е.И., Мута­ев Э.В., Бондарь В.С. Перспективы использования ство­ловых клеток в терапии заболеваний тканей пародонта. Сибирское медицинское обозрение 2012; 4(76): 3–6.
  11. Рубникович С.П., Хомич И.С. Костные транс­плантаты и заместители для устранения дефектов и аугментации челюстных костей в имплантологии и пародонтологии. Стоматолог. Минск 2014; 1(12): 77–86.
  12. Рубникович С.П., Хомич И.С. Применение совре­менных остеопластических материалов в хирургической стоматологии. Стоматолог. Минск 2014; 4(15): 56–57.
  13. Стволовые клетки в стоматологии. Современная сто­матология 2012; 2: 28–30.
  14. Куцевляк В.Ф., Куцевляк В.И., Омельченко Е.А., Забирник А.С., Цыганова И.В. Направленная реге­не­рация костных дефектов альвеолярного отростка с ис­пользованием стволовых клеток костного мозга на коллапановой подложке у экспериментальных животных. Вестник проблем биологии и медицины 2015; 3(2): 368–374.
  15. Перова М.Д., Гайворонская Т.В., Карпюк В.Б., Тро­пина А.В. Характеристика степени замещения паро­донтальных дефектов разной топографии после ауто­трансплантации васкулярнoстромальноклеточной фрак­ции липоаспирата. Кубанский научный медицинский вест­ник 2013; 6(141): 142–148.
  16. Рубникович С.П., Владимирская Т.Э., Швед И.А., Веялкина Н.Н. Метод моделирования экспе­ри­мен­тального пародонтита у животных. Медицинский журнал 2011; 1(35): 97–101.
  17. Туманов В.П., Жакота Д.А., Корчагина Н.С. 30-лет­ний опыт разработки и применения клеточных технологий в клинической практике. Пластическая хирургия и косметология 2012; 3: 433–449.
  18. Сельская Б.Н., Мусина Л.А., Камилов Ф.Х. Влия­ние коллагенсодержащего препарата на морфологическое состояние кожи в эксперименте. Казанский медицинский журнал 2017; 98(6): 962–967, https://doi.org/10.17750/kmj2017-962.
  19. Камилов Ф.Х., Сельская Б.Н., Данилова О.В., Ка­пу­лер О.М. Метаболизм коллагена в коже экс­периментальных животных при интердермальной инъекции немодифицированного бычьего коллагена I типа. Вестник Удмуртского университета. Серия Био­логия. Науки о Земле 2017; 27(3): 356–361.
  20. Метод направленной тканевой регенерации в па­ро­донто-альвеолярной реконструкции. Под ред. Оре­хо­вой Л.Ю. М: Литерра; 2017.
  21. Комаров А.Н., Кезина Л.П., Силина Е.В., Габитов Р.Б., Орло­ва А.С., Корейба К.А. Клиническая эффективность био­пластического материала на ос­но­ве нативного коллагена I типа в лечении про­лежней у пациентов в нейрореабилитации: рандо­мизированное сравнительное исследование. Вестник вос­станови­тель­ной медицины 2017; 2(78): 74–83.
  22. Ступин В.А., Силина Е.В., Горский В.А., Горю­нов С.В., Жидких С.Ю., Комаров А.Н., Сивков А.С., Га­битов Р.Б., Золотарева Л.С., Синельникова Т.Г., Баранцевич Е.Р., Богомолов М.С., Корейба К.А., Бог­данов Е.А., Кривихин В.Т., Бакунов М.Ю., Елисеева М.Е., Кривихин Д.В. Эффективность и безопасность местного применения коллагенового биоматериала в комплексном лечении синдрома диабетической стопы (итоги много­центрового рандомизированного клинического иссле­до­вания. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова 2018; 6: 91–100, https://doi.org/10.17116/hirurgia2018691-100.
  23. Силина Е.В., Ступин В.А., Золотарева Л.С., Ко­ма­ров А.Н. Применение нативного коллагена в клинической практике для лечения хронических ран. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова 2017; 9: 78–84, https://doi.org/10.17116/hirurgia2017978-84.


Журнал базах данных

pubmed_logo.jpg

web_of_science.jpg

scopus.jpg

crossref.jpg

ebsco.jpg

embase.jpg

ulrich.jpg

cyberleninka.jpg

e-library.jpg

lan.jpg

ajd.jpg

SCImago Journal & Country Rank