Гипоксическое прекондиционирование донорской области: клинико-морфологическая оценка состояния аутодермотрансплантата кожи

Цель исследования — оценить эффективность метода гипоксического прекондиционирования донорской области путем клинико-морфологического изучения свойств сформированного аутодермотрансплантата.

Материалы и методы. Аутодермотрансплантаты формировали из области гипоксического прекондиционирования донорской зоны. Исследовали процессы репаративной регенерации, ангиогенез в кожном трансплантате и косметический эффект при заживлении донорской раны. С этой целью пяти пациентам с хроническими ранами мягких тканей на фоне сахарного диабета выполняли свободную кожную пластику традиционным способом (контрольная группа), пяти пациентам — с гипоксическим прекондиционированием донорской зоны (основная группа). На 5-е сутки после свободной кожной пластики проводили морфологическое и иммуногистохимическое исследование аутодермотрансплантата, на 14-е сутки после кожной пластики оценивали площадь приживления трансплантата.

Результаты. Площадь приживления аутодермотрансплантата на 14-е сутки в контрольной группе составила 56 [52; 64]%, в основной группе — 91 [84; 95]% (р=0,007). Заживление донорских ран у больных в контрольной группе отмечено на 18 [16; 21]-е сутки, в основной группе — на 14 [12; 17]-е (р=0,002). По данным прижизненного гистологического исследования биоптата в основной группе отмечался богатоклеточный фрагмент кожи в сравнении с бедноклеточным фрагментом кожи в контрольной. При двойном последовательном иммуногистохимическом окрашивании препаратов с использованием антител к антигенам Ki-67 и CD31 в основной группе отмечалась повышенная пролиферация эндотелиальных клеток дермы: индекс пролиферации в контрольной группе составил 17 [13; 24]%, в основной — 29 [22; 33]% (р=0,011). Повышение антител к VEGF и Fli-1 в основной группе также указывало на интенсивность процессов ангиогенеза у этих пациентов.

Заключение. Результаты прижизненного гистологического и иммуногистохимического исследования свидетельствуют об эффективности гипоксического прекондиционирования донорской области с целью повышения интенсивности процессов репаративной регенерации и ангиогенеза в трансплантате.

1. Catrina S.B., Zheng X. Disturbed hypoxic responses as a pathogenic mechanism of diabetic foot ulcers. Diabetes Metab Res Rev 2016; 32(1): 179–185, https://doi.org/10.1002/dmrr.2742.
2. Всемирная организация здравоохранения. Глобаль­ный доклад по диабету: 2016. URL: http://www.who.int/diabetes/global-report/ru/.
3. Липатов К.В., Пермяков С.В., Асатрян А.Г., Боро­дин А.В., Гостищев В.К. Рентгеноэндоваскулярная хирургия при критической ишемии нижних конечностей с гнойно-некротическим поражением стоп. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова 2017; 9: 4–16.
4. Рисман Б.В. Дифференцированная тактика закры­тия послеоперационных дефектов кожи у пациентов с гнойно-некротическими осложнениями синдрома диабети­ческой стопы. Новости хирургии 2011; 19(2): 66–71.
5. Kotick J.D., Sandelin R.S., Klein R.D. Deep inferior epigastric perforator free flaps for use in complicated groin wound repair: a case report of severe groin scar contracture and review of pedicled and free flaps in groin wound repair. J Hand Microsurg 2017; 9(2): 101–106, https://doi.org/10.1055/s-0037-1604475.
6. Capla J.M., Ceradini D.J., Tepper O.M., Callaghan M.J., Bhatt K.A., Galiano R.D., Levine J.P., Gurtner G.C. Skin graft vascularization involves precisely regulated regression and replacement of endothelial cells through both angiogenesis and vasculogenesis. Plast Reconstr Surg 2006; 117(3): 836–844, https://doi.org/10.1097/01.prs.0000201459.91559.7f.
7. Мавликеев М.О., Титова А.А., Гудз Д.О., Деев Р.В. Современные методы исследования ангиогенеза в клини­ческой практике. Наука молодых — Eruditio Juvenium 2017; 5(1): 110–123.
8. Ливанова А.А., Деев Р.В., Ризванов А.А. Сов­ре­­менные методы исследования ангиогенеза в экс­перименте. Гены и клетки 2015; 10(1): 115–127.
9. Богданов С.Б., Терман Е.А., Богданова Ю.А. Пато­морфологические аспекты современных способов хирурги­ческого лечения в комбустиологии. Медицинский вестник Юга России 2016; 2: 33–38.
10. Ващенко Л.Н., Дашкова И.Р., Кечеджиева Э.Э., Бабиева С.М. Возможности комбинированной аутодермо­пластики в лечении больных злокачественными ново­об­разованиями кожи конечностей (клиническое наблюдение). Современная онкология 2015; 17(4): 45–50.
11. Бесчастнов В.В., Измайлов С.Г., Рябков М.Г., Багрянцев М.В., Щелчкова Н.А., Перетягин П.В. Способ тренировки аутодермотрансплантата к условиям гипоксии на фоне скомпрометированной микроциркуляции. Вестник экспериментальной и клинической хирургии 2017; 10(1): 72–78, https://doi.org/10.18499/2070-478x-2017-10-1-72-78.
12. Semenza G.L. Hypoxia-inducible factors in physiology and medicine. Cell 2012; 148(3): 399–408, https://doi.org/10.1016/j.cell.2012.01.021.
13. Диагностическая иммуногистохимия опухолей. Под. ред. Глузмана Д.Ф. Киев: Морион; 2003; 193 с.
14. Potente M., Gerhardt H., Carmeliet P. Basic and therapeutic aspects of angiogenesis. Cell 2011; 146(6): 873–887, https://doi.org/10.1016/j.cell.2011.08.039.
15. Zimna A., Kurpisz M. Hypoxia-inducible factor-1 in physiological and pathophysiological angiogenesis: applications and therapies. Biomed Res Int 2015; 2015: 1–13, https://doi.org/10.1155/2015/549412.
16. Кирик О.В., Безнин Г.В., Коржевский Д.Э. Маркеры пролиферации, применяемые в гистологических иссле­до­ваниях. Морфология 2009; 136(6): 95–100.

Orlinskaya N.Yu., Davydenko D.V., Bagryantsev M.V., Ryabkov M.G., Kichin V.V., Pavlenko I.V., Beschastnov V.V. Hypoxic Preconditioning of the Skin Graft Donor Area: Clinical and Morphological Assessment. Sovremennye tehnologii v medicine 2018; 10(3): 110, https://doi.org/10.17691/stm2018.10.3.13