Реконструкция периферического нерва при использовании биодеградируемого и бионедеградируемого кондуитов в эксперименте

Цель исследования — изучить влияние кондуитов — нерезорбируемого из Реперена и резорбируемого фибринового из Тиссукола — на регенерацию седалищного нерва крысы в условиях диастаза его культей.

Материалы и методы. Эксперименты проведены на белых нелинейных крысах-самцах репродуктивного возраста (n=14). Животные были разделены на три группы: 1-я — интактные (n=5) — исследована морфология седалищного нерва в области планируемой пластики; 2-я — (n=4) пластика нерва выполнена кондуитом из нерезорбируемого материала Реперена; 3-я (n=5) — пластика осуществлена кондуитом из резорбируемого материала Тиссукола. Животных наркотизировали изофлураном. После полной перерезки седалищного нерва на уровне средней трети бедра его культи вставляли в кондуит с внутренним диаметром 2 мм и длиной 10 мм, заполненный физиологическим раствором. Диастаз в 5 мм создавали путем разведения концов нерва и закрепления эпиневрия за края трубки узловыми швами с помощью полипропиленовой мононити 8/0. Выполняли тотальный подсчет миелиновых нервных волокон в области пластики (тубулирования) в дистальной части нерва и определяли особенности формирования соединительнотканных оболочек через 14 нед после травмы.

Результаты. Исследованы структурные особенности седалищного нерва в области тубулирования с использованием для его реконструкции резорбируемого и нерезорбируемого кондуитов. При применении обоих видов кондуитов выявлена стереотипность количества нервных волокон в дистальной части восстановленного нерва и клинических показателей, приближенных к норме.

Заключение. Полученные результаты позволяют считать кондуит из нерезорбируемого материала Реперена перспективным для нейропластики наряду с резорбируемым кондуитом из Тиссукола.

1. Меркулов М.В. Оптимизация восстановления иннервации тканей при повреждениях периферических нервов конечностей. Автореф. дисс. … докт. мед. наук. М; 2014.
2. Aberg M., Ljungberg C., Edin E., Millqvist H., Nordh E., Theorin A., Terenghi G., Wiberg M. Clinical evaluation of a resorbable wrap-around implant as an alternative to nerve repair a prospective, assessor-blinded, randomised clinical study of sensory motor and functional recovery after peripheral nerve repair. J Plast Reconstr Aesthet Surg 2009; 62(11): 1503–1509, https://doi.org/10.1016/j.bjps.2008.06.041.
3. Naff N.J., Ecklund J.M. History of peripheral nerve surgery techniques. Neurosurg Clin N Am 2001; 12(1): 197–209.
4. Terzis J.K., Sun D.D., Thanos P.K. Historical and basic science review: past, present, and future of nerve repair. J Reconstr Microsurg 1997; 13(3): 215–225, https://doi.org/10.1055/s-2007-1006407.
5. Haselbach D., Raffoul W., Larcher L., Tremp M., Kalbermatten D.F., di Summa P.G. Regeneration patterns influence hindlimb automutilation after sciatic nerve repair using stem cells in rats. Neurosci Lett 2016; 634: 153–159, https://doi.org/10.1016/j.neulet.2016.10.024.
6. Васильев М.В. Хирургическое лечение больных с изолированным повреждением лучевого нерва и в сочетании с переломом плечевой кости (клинико-экспериментальное исследование). Автореф. дисс. … канд. мед. наук. Казань; 2010.
7. Горшков Р.П. Реабилитация больных с повреждением стволов плечевого сплетения (клинико-экспериментальное исследование). Автореф. дисс. … докт. мед. наук. Саратов; 2009.
8. Шевелев И.Н. Микрохирургия периферических нервов. М; 2011; 304 с.
9. Khalifa H., Belkheyar Z., Diverrez J.P., Oberlin C. Results of 24 nerve repairs at more than one year post-injury. Chir Main 2012; 31(6): 318–323, https://doi.org/10.1016/j.main.2012.09.001.
10. Konofaos P., Ver Halen J.P. Nerve repair by means of tubulization: past, present, future. J Reconstr Microsurg 2013; 29(3): 149–164, https://doi.org/10.1055/s-0032-1333316.
11. Lundborg G., Rosén B. Hand function after nerve repair. Acta Physiol (Oxf) 2007; 189(2): 207–217, https://doi.org/10.1111/j.1748-1716.2006.01653.x.
12. Mermans J.F., Franssen B.B.G.M., Serroyen J., Van der Hulst R.R.W.J. Digital nerve injuries: a review of predictors of sensory recovery after microsurgical digital nerve repair. Hand (N Y) 2012; 7(3): 233–241, https://doi.org/10.1007/s11552-012-9433-1.
13. Reichl H., Ensat F., Dellon A.L., Wechselberger G. Successful delayed reconstruction of common peroneal neuroma-in-continuity using sural nerve graft. Microsurgery 2013; 33(2): 160–163, https://doi.org/10.1002/micr.22062.
14. Унжаков В.В. Особенности повторных хирургических вмешательств на нервных стволах. СПб: Специальная литература; 2008; 162 с.
15. Щудло Н.А., Щудло М.М., Добрушкин А.М., Шамара А.В., Мещерягина И.А., Прудникова О.Г., Степа­нян А.Б. Метод этапной регистрации денервационных симптомов и его возможности в оценке эффективности различных способов восстановления целостности поврежденного нерва. Гений ортопедии 1996; 4: 13–19.
16. Meek M.F., Coert J.H., Robinson P.H. Poor results after nerve grafting in the upper extremity: quo vadis? Microsurgery 2005; 25(5): 396–402, https://doi.org/10.1002/micr.20137.
17. Roganovic Z., Ilic S., Savic M. Radial nerve repair using an autologous denatured muscle graft: comparison with outcomes of nerve graft repair. Acta Neurochir (Wien) 2007; 149(10): 1033–1038, https://doi.org/10.1007/s00701-007-1269-z.
18. Singh R., Mechelse K., Hop W.C., Braakman R. Long-term results of transplantations to repair median, ulnar, and radial nerve lesions by a microsurgical interfascicular autogenous cable graft technique. Surg Neurol 1992; 37(6): 425–431, https://doi.org/10.1016/0090-3019(92)90130-F.
19. Ray W.Z., Mackinnon S.E. Clinical outcomes following median to radial nerve transfers. J Hand Surg Am 2011; 36(2): 201–208, https://doi.org/10.1016/j.jhsa.2010.09.034.
20. Zhang M.Y., Wang J.P., Chen L.B. Repair and reconstruction of radial nerve injury. Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi 2001; 15(6): 358–359.
21. Pfister L.A., Papaloizos M., Merkle H.P., Gander B. Hydrogel nerve conduits produced from alginate/chitosan complexes. J Biomed Mater Res A 2007; 80(4): 932–937, https://doi.org/10.1002/jbm.a.31052.
22. Trehan S.K., Model Z., Lee S.K. Nerve repair and nerve grafting. Hand Clin 2016; 32(2): 119–125, https://doi.org/10.1016/j.hcl.2015.12.002.
23. Schiraldi L., Sottaz L., Madduri S., Campisi C., Oranges C.M., Raffoul W., Kalbermatten D.F., di Summa P.G. Split-sciatic nerve surgery: A new micrsurgical model in experimental nerve repair. J Plast Reconstr Aesthet Surg 2018; 71(4): 557–565, https://doi.org/10.1016/j.bjps.2017.11.007.
24. Lin T., Liu S., Chen S., Qiu S., Rao Z., Liu J., Zhu S., Yan L., Mao H., Zhu Q., Quan D., Liu X. Hydrogel derived from porcine decellularized nerve tissue as a promising biomaterial for repairing peripheral nerve defects. Acta Biomater 2018; 73: 326–338, https://doi.org/10.1016/j.actbio.2018.04.001.
25. Челышев Ю.А., Богов А.А. Экспериментальное обоснование применения кондуитов нерва. Неврологический вестник 2008; 40(4): 101–109.
26. Gu J., Xu H., Xu Y.P., Liu H.H., Lang J.T., Chen X.P., Xu W.H., Deng Y., Fan J.P. Olfactory ensheathing cells promote nerve regeneration and functional recovery after facial nerve defects. Neural Regen Res 2019; 14(1): 124–131, https://doi.org/10.4103/1673-5374.243717.
27. di Summa P.G., Kalbermatten D.F., Pralong E., Raffoul W., Kingham P.J., Terenghi G. Long-term in vivo regeneration of peripheral nerves through bioengineered nerve grafts. Neuroscience 2011; 181: 278–291, https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2011.02.052.
28. di Summa P.G., Kingham P.J., Raffoul W., Wiberg M., Terenghi G., Kalbermatten D.F. Adipose-derived stem cells enhance peripheral nerve regeneration. J Plast Reconstr Aesthet Surg 2010; 63(9): 1544–1552, https://doi.org/10.1016/j.bjps.2009.09.012.
29. Reid A.J., Sun M., Wiberg M., Downes, S., Terenghi G., Kingham P.J. Nerve repair with adipose-derived stem cells protects dorsal root ganglia neurons from apoptosis. Neuroscience 2011; 199: 515–522, https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2011.09.064.
30. Labroo P., Shea J., Edwards K., Ho S., Davis B., Sant H., Goodwin I., Gale B., Agarwal J. Novel drug delivering conduit for peripheral nerve regeneration. J Neural Eng 2017; 14(6): 066011, https://doi.org/10.1088/1741-2552/aa867d.
31. di Summa P.G., Schiraldi L., Cherubino M., Oranges C.M., Kalbermatten D.F., Raffoul W., Madduri S. Adipose derived stem cells reduce fibrosis and promote nerve regeneration in rats. Anat Rec (Hoboken) 2018; 301(10): 1714–1721, https://doi.org/10.1002/ar.23841.
32. Wang W., Degrugillier L., Tremp M., Prautsch K., Sottaz L., Schaefer D.J., Madduri S., Kalbermatten D. Nerve repair with fibrin nerve conduit and modified suture placement. Anat Rec (Hoboken) 2018; 301(10): 1690–1696, https://doi.org/10.1002/ar.23921.
33. Тихомиров С.Е., Цыбусов С.Н., Кравец Л.Я., Фраер­ман А.П., Балмасов А.А. Пластика дефектов свода черепа и твердой мозговой оболочки новым полимерным материалом Реперен. Современные технологии в медицине 2010; 2: 6–11.
34. Шелудяков А.Ю., Тихомиров С.Е., Ступак Ю.А. Применение протектора из материала Реперен при микроваскулярной декомпрессии тройничного нерва. Современные технологии в медицине 2014; 6(1): 121–123.
35. Попель С.Л., Мыцкан Б.М. Структурный и морфометрический анализ нервных волокон седалищного нерва крыс разного возраста в норме и при гипокинезии. Журнал Гродненского государственного медицинского университета 2016; 1: 60–66.
36. Ноздрачев А.Д., Поляков Е.Л. Анатомия крысы. СПб: Лань; 2001; 464 с.
37. Щудло Н.А. Морфологические особенности регенерации поврежденного нерва в условиях дозированного растяжения. Гений ортопедии 2006; 2: 89–94.
38. Sulaiman W., Gordon T. Neurobiology of peripheral nerve injury, regeneration, and functional recovery: from bench top research to bedside application. Ochsner J 2013; 13(1): 100–108.
39. Takeuchi H., Ikeguchi R., Aoyama T., Oda H., Yurie H., Mitsuzawa S., Tanaka M., Ohta S., Akieda S., Miyazaki Y., Nakayama K., Matsuda S. A scaffold-free Bio 3D nerve conduit for repair of a 10-mm peripheral nerve defect in the rats. Microsurgery 2019; 40(2): 207–216, https://doi.org/10.1002/micr.30533.
40. de Luca A.C., Lacour S.P., Raffoul W., di Summa P.G. Extracellular matrix components in peripheral nerve repair: how to affect neural cellular response and nerve regeneration? Neural Regen Res 2014; 9(22): 1943–1948, https://doi.org/10.4103/1673-5374.145366.
41. Kappos E.A., Engels P.E., Tremp M., zu Schwabedissen M.M., di Summa P.G., Fischmann A., von Felten S., Scherberich A., Schaefer D.J., Kalbermatten D.F. Peripheral nerve repair: multimodal comparison of the long-term regenerative potential of adipose tissue-derived cells in a biodegradable conduit. Stem Cells Dev 2015; 24(18): 2127–2141, https://doi.org/10.1089/scd.2014.0424.

Velichanskaya A.G., Abrosimov D.A., Bugrova M.L., Kazakov A.V., Pogadaeva E.V., Radaev A.M., Blagova N.V., Vasyagina T.I., Ermolin I.L. Reconstruction of the Rat Sciatic Nerve by Using Biodegradable and Non-Biodegradable Conduits. Sovremennye tehnologii v medicine 2020; 12(5): 48, https://doi.org/10.17691/stm2020.12.5.05